Стерилизация перевязочного материала - это обязательная мера, гарантирующая стопроцентную чистоту и безопасность. Благодаря специальным методам очистки обеспечивается гибель любых патогенных микроорганизмов, способных вызывать бактериальные, вирусные и грибковые заболевания.

Что подразумевается под термином «стерилизация»

На сегодняшний день самыми распространенными методами очищения перевязочного материала и медицинских изделий в клинических условиях являются:

• автоклавирование;
• воздушная стерилизация в сухожаровом шкафу;
• обработка химическими растворами, газом.

В некоторых случаях прибегают к радиационной обработке. Причем каждый из этих методов состоит из трех основных этапов, включая дезинфекцию, очистку предстерилизационную и непосредственно стерилизацию.

Какой материал считается перевязочным

К данной категории относятся разновидности тканей, используемых для обработки ран, в том числе операционного поля (тампонады, повязки, салфетки медицинские и др.). Материал, применяемый для перевязок, обладает высоким уровнем гигроскопичности, поэтому быстро поглощает жидкое отделяемое из открытых ран, мгновенно высыхает, но при этом должен оставаться эластичным и прочным. Кроме того, при подготовке стерильных бинтов, салфеток, турунд и прочих видов марлевых изделий учитывается их гипоаллергенность. Важную роль играет доступность и дешевизна перевязочного материала, поскольку в большинстве случаев требуется его значительный расход. После стерилизации перевязочный материал не должен терять своих свойств.

Преимущественно распространены марля, хлопковая вата, лигнин. Бинты, медицинские салфетки, тампоны, турунды и прочие изделия получают из марли. Перевязочный материал не обходится без использования гигроскопической хлопковой ваты. Она продается в любой аптеке, используется для различных целей, в зависимости от которых приобретают нестерильную или стерильную вату. Оба вида обладает отличными всасывающими способностями, но в медицинской практике чаще используют стерильную вату. Она не допускает попадания в рану пыли, мусора, защищает ее от ударов, воздействия солнечных лучей. При этом вату кладут в рану только поверх стерильного бинта, в противном случае ее пушистые волокна намокнут и прилипнут к эпителию.

Вместо ваты, можно применять лигнин (это тончайшие гофрированные бумажные листы, которые изготавливают из дерева. Чтобы зафиксировать повязки, наложенные на раневую поверхность, используют трубчатые и эластичные бинты - это тоже перевязочный материал, стерилизация которого допускает повторное использование.

Виды обработки медицинских изделий для перевязки

В зависимости от режима стерилизации перевязочного материала, важно придерживаться строго алгоритма действий и осуществлять контроль над ходом процесса обработки. Принципиальное значение в вопросах стерилизации изделий и материала имеет срок сохранения стерильности. Учитывается также период абсолютной чистоты марлевых, ватных изделий и медицинских бикс, указанный производителем. Далее рассмотрим более подробно каждый из видов стерилизации, которые применяются в современных клиниках.

Что такое автоклавирование

Это один из распространенных и доступных предполагающий воздействие пара. Метод основан на простых законах физики. Как известно, при кипячении (100 °С) вода образует пар, для этого нет необходимости создавать дополнительное давление. Но если его все же увеличить на 0,5 атмосферы, то пар начнет выделяться при более высокой температуре. Это идеальные условия для гибели всей патогенной микрофлоры, в том числе и тех микроорганизмов, которые устойчивы к высоким температурам.

Продолжительность обработки перевязочного материала зависит от того, при какой температуре она будет происходить:

• при 110 °С экспозиция длится один час;
• при 120-126 °С - порядка 45 минут;
• при 127-133 °С достаточно получаса;
• при температуре 134 °С микробы гибнут за 15 минут.

Стоит отметить, что повторно применять перевязочный материал после стирки можно только в том случае, если он был задействован в негнойной среде.

Прибор для стерилизации

Автоклав представляет собой металлическую емкость, обладающую двойными прочными стенками. Между ними заливают воду, после чего герметично закрывают крышку винтами, а снизу включают ТЭН. Как только вода закипает, начинает образовываться пар, который наполняет внутреннюю часть автоклава с перевязочным материалом.

После укладки бикс закрывают крышкой, за счет чего емкость становится полностью герметичной. Вне прибора для стерилизации биксы могут храниться не более двух дней. Внутри их выстилают тканью. При заполнении автоклава нельзя трамбовать биксы, важно оставить свободное место, чтобы пар мог проникать внутрь. Удобнее заполнять емкости для стерилизации однородными изделиями.

В некоторых случаях автоклавирование подразумевает стерилизацию белья в специальных мешках. Здесь действуют такие же правила, как и при укладке бикса. Единственное, что стоит отметить, это необходимость использовать парные мешки, одетые один на другой. Это позволит сохранить чистоту даже в том случае, если развязывать мешок нестерильными руками. Верхний мешок сдвигают книзу, а внутренний кладут на стерильную поверхность и разбирают его содержимое.

Алгоритм действий при работе с автоклавом

Метод подразумевает применение мощного парового потока, однако для его применения не обойтись без специального аппарата для стерилизации перевязочного материала. Он называется автоклавом. Для того чтобы обработать изделий должным образом и не сомневаться в их стопроцентной чистоте, нужно соблюдать несколько простых правил:

• Перед процедурой обязательно обработать внутреннюю часть бикса медицинским спиртом.
• На дно укладывают чистую простыню, а сверху на нее закладывают емкость постельным бельем, марлевыми и ватными изделиями. Допускается также стерилизация резиновых предметов и медицинских инструментов (их оборачивают полотенцем и отправляют в бикс).
• Затем, после загрузки белья для стерилизации размещают несколько индикаторов. После обработки перевязочного материала они укажут, надлежащим ли образом прошла стерилизация.

Проба на стерильность по Микуличу

Чтобы убедиться в качестве стерилизации перевязочного материала в автоклаве, проводят один из несложных тестов. Самый простой и распространенный - это проба Микулича. Выполняется она следующим образом:

• На полоске бумаге пишут ручкой любое слово, опускают индикатор в жидкость, больше напоминающую клейстер, состоящую из крахмала и воды. После этого бумажке дают высохнуть.
• Сухую полоску снова смачивают, но на этот раз в растворе Люголя, поэтому она темнеет, становится синей и написанное слово на ней пропадает.
• Высушенный индикатор отправляют в автоклав вместе со стерилизуемым перевязочным материалом. Если после экспозиции бумажка снова становится белой, значит обработка прошла успешно.

Бактериологическая проверка

Это прямой способ узнать, осталась ли на перевязочном материале патогенная флора. Чтобы убедиться в стерильности изделий, необходимо вскрыть бикс прямо в операционной и провести по обработанным материалам марлевыми лоскутами, увлажненными изотоническим раствором хлорида натрия. Затем смоченные марлевые тампоны отправляют в пробирку. Бактериологический контроль проводят несколько раз в месяц. Этот метод контроля чистоты и стерильности считается самым надежным.

Воздушная обработка перевязочных материалов

При воздушной обработке стерилизующего эффекта удается достичь за счет мощной подачи сухого и горячего воздуха. Отличительная особенность метода заключается в полном отсутствии влаги на внутренних стенках бикса, в связи с чем срок стерильности увеличивается, а металлической емкости не грозит коррозия металла.

Вместе с тем, воздушный метод обработки перевязочных материалов имеет ряд недостатков. В первую очередь стоит отметить затяжное и неравностепенное прогревание помещенных в бикс изделий. Для того чтобы простерилизовать материалы сухим горячим воздухом потребуется задействовать более высокие температуры. Минимально допустимый температурный порог - 160 °С. При этом продолжительность экспозиции при данном режиме должна составлять не менее 2 часов. Чтобы обработать перевязочный материал за полчаса, понадобится воздушный поток в пределах 200 °С.

Если в автоклаве разрешено обрабатывать резиновые и полимерные детали, то воздушный метод этого не допускает. Кроме того, горячим воздухом невозможно обдуть упаковочные материалы. Эффективность стерилизации перевязочного материала в сухожаровом шкафу зависит от того, насколько равномерно проникнет горячий воздух к изделиям, а для этого крайне важно соблюдать нормы загрузки стерилизатора и скорость принудительной циркуляции воздуха (она должны быть не менее 1 м/с).

Газовая стерилизация

В отличие от остальных методов обработки перевязочного материала, воздушный и паровой являются наиболее безопасными и экологически безвредными. Газовая обработка медицинских изделий подразумевает использование этилена-оксида или формальдегида. Пары этих веществ обладают высоким токсичным действием. К методу газовой стерилизации прибегают, как правило, в том случае, если отсутствует возможность проведения паровой или воздушной.

Чтобы провести газовую обработку перевязочных материалов, потребуется создать все необходимые для этого условия. В газообразной форме химические соединения этилен-оксида не вредят изделиям, не провоцируют коррозийные процессы. Таким образом можно обрабатывать любые ткани: натуральную кожу, шерсть, бумагу, пластмасс, пластик, дерево и т. д. Пары, получаемые в процессе стерилизации, обладают сильным бактерицидным действием и проникают максимально глубоко.

Однако токсичность и взрывоопасность этилен-оксида - его главные недостатки. Для стерилизации изделий и медицинских материалов применяют пары 40 % спиртового формальдегида, испаряющегося из формалина. Для медицинского персонала пары этих веществ небезопасны, к тому же сам процесс газовой стерилизации является весьма продолжительным. Именно поэтому данный метод обработки перевязочного материала используется редко.

Обработка химическими растворами

Еще один вспомогательный метод стерилизации перевязочного материала, который применяется только в том случае, если отсутствует возможность использования других способов. Химическая стерилизация имеет ряд негативных моментов, поскольку обрабатываемые изделия очищают без защитных упаковок. Кроме того, после такой очистительной процедуры потребуется дополнительное полоскание, а это, в свою очередь, может привести к вторичной контаминации. При этом растворы, которые используются для химической стерилизации доступны повсеместно и не требуют дополнительной подготовки перевязочного материала.

Стерилизуемые вещи раскладывают в биксы, не трамбуя. После того как процедура очистки завершится, изделия несколько раз погружают в дистиллированную воду. Если стерилизация осуществлялась перекисью водорода, полоскание проводится дважды, в остальных случаях - не менее трех раз. После каждого погружения стерилизованных вещей воду меняют.

Радиационный метод

В медицинской практике используется крайне редко, в основном тогда, когда есть необходимость стерилизации изделий из термолабильных материалов. В качестве стерилизующих агентов используются ионизирующие гамма- и бета-лучи. Радиационный метод обработки перевязочного материала предполагает обязательное использование бумажных и полиэтиленовых пакетов. Главное достоинство этого способа заключается в продолжительном сроке стерильности.

Радиационный метод применяется в промышленности. К его применению прибегают производственные предприятия, занимающиеся выпуском стерильных изделий однократного использования.

СТЕРИЛИЗАЦИЯ ПЕРЕВЯЗОЧНОГО МАТЕРИАЛА И БЕЛЬЯ а) Виды перевязочного материала и операционного белья.К перевязочному материалу относятся марлевые шарики, тампоны, салфетки, бинты, турунды, ватно-марлевые тампоны. Перевязочный ма­териал обычно готовят непосредственно перед стерилизацией, используя специальные приемы для предотвращения осыпания отдельных нитей марли. Для удобства подсчета шарики укладывают по 50-100 штук в мар­левые салфетки, а салфетки и тампоны связывают по 10 штук.Перевязочный материал повторно не используется и после приме­нения сжигается. К операционному белью относятся -хирургические халаты, просты­ни, полотенца, подкладные. Материалом для их изготовления являются хлопчатобумажные ткани. Операционное белье многократного примене­ния после использования проходит стирку,причем отдельно от других видов белья.б) Стерилизация Перевязочный материал и белье стерилизуют автоклавированием при стандартных режимах. Перед стерилизацией перевязочный материал и бельё укладывают в биксы. Существуют три основных вида укладки бикса: Универсальная укладка Обычно используется при работе в перевязочной и при малых опера­циях. Бикс условно разделяется на секторы, и каждый из них заполняет­ся определенным видом перевязочного материала или белья: в один сек­тор помещаются салфетки, в другой - шарики, в третий - тампоны и т. д. Целенаправленная укладка Предназначена для выполнения типичных манипуляций, процедур и малых операций. Например, укладка для трахеостомии, для катетеризации подключичной вены, для перидуральной анестезии и пр. В бикс укладывается все инструменты, перевязочный материал и белье, необ­ходимые для осуществления процедуры. Видовая укладка Обычно используется в операционных, где требуется большое коли­чество стерильного материала.. При атом в"один бикс укладывают, на­пример, хирургические халаты, в другой - простыни, в третий - сал­фетки и так далее., В небольших количествах используется перевязочный материал в упаковках, прошедший лучевую стерилизацию. Существуют и специаль­ные наборы операционного белья одноразового использования (халаты и простыни), изготовленного из синтетических тканей, также подвергших­ся лучевой стерилизации. СПОСОБЫ КОНТРОЛЯ СТЕРИЛЬНОСТИ Все действия-по обработке и стерилизации инструментов, белья и пр. подлежат обязательному контролю. Контролируют как эффективность - стерилизации, так и качество предстерилизационной подготовки. а) Контроль стерильности Все методы контроля стерильности делят на прямой и непрямые. ~ Прямым методом контроля стерильности является бактериологическое исследование: специальной стерильной палочкой проводят по сте­рильным инструментам (коже рук хирурга или операционного поля, опе­рационному белью и пр.), после чего помещают ее в стерильную пробирку и отправляют в бактериологическую лабораторию, где производят посев на различные питательные среды и таким образом определяют бактери­альную загрязненность. Бактериологический метод контроля стерильности является наибо­лее точным. Отрицательным моментом является длительность проведе­ния исследования: результат посева будет готов лишь через 3-5 суток, а использовать инструменты нужно непосредственно после стерилизации. Поэтому бактериологическое исследование проводится в плановом поряд­ке и по его результатам судят о методических погрешностях в работе ме­дицинского персонала или дефектах используемого оборудования. По су­ществующим нормативам, несколько различающимся для разного вида инструментария, бактериологическое исследование должно проводить­ся 1 раз в 7-10 дней. Непрямые методы контроля используются в основном при термичес­ких способах стерилизации и позволяют определить величину темпера­туры, при которой проводилась обработка, не давая точный ответ на при­сутствие или отсутствие микрофлоры. Преимущество непрямых методов в быстроте получения результата и возможности использования при каж­дой стерилизации.При автоклавировании в бикс обычно укладывают ампулу (пробирку) с порошкообразным веществом, имеющим температуру плавления в пре­делах 110-120°С. После стерилизации при открытии бикса сестра преж­де всего обращает внимание на эту ампулу: если вещество расплавилось, то материал (инструменты) можно считать стерильными. Если же нет - нагревание было недостаточным и пользоваться таким материалом нельзя - он нестерилен. Для подобного метода наиболее часто использу­ются: бензойаая кислота ((° плавл. - 120°С), резорцин (<; ° плавл. - 119°С), антипирин (1° плавл. - 110°С). Вместо ампулы в бикс можно по­местить термоиндикатор или максимальный термометр, по которым так­же можно определить, достигалась ли в процессе обработки необходимая температура.

9. Устройство автоклава.Техника стерилизации.

Принципиально каждый автоклав имеет рабочую камеру, па-рообразователь с манометром давления, нагревательный эле­мент, систему подачи пара, кран выпуска пара и предохрани­тельный клапан. Техника автоклавирования включает следующие действия:1. Заливание воды в парообразователь.2. Закладывание биксов в камеру автоклава.3. Нагрев воды до образования пара.4. Подъем давления в рабочей камере до 1 атм. и выпуск остаточного воздуха.5. Подъем давления до режима стерилизации.6. В процессе стерилизации следует учитывать следующие параметры: 1, 1 атм. - 121, 2°С - 60 мин., 1, 5 атм. - 126, 8°С - 45 мин., 2 атм. - 132, 9°С - 30 мин., 2, 2» - 135, ГС - 20 мин., 2, 4» - 137, 2°С - 15 мин.7. Выключение автоклава.8. Выпуск пара, снижение его давления в камере до нуля.9. Просушивание белья в течение 5 мин. при закрытой крышке.10. Открывание крышки, изъятие биксов, закрывание колец на барабанах.11. Выпуск воды из парообразователя.12. Просушивание автоклава. Закрытый бикс сохраняет стерильность находящихся в нём предметов в течение 72 часов.

10. Методы стерилизации оптических инструментов. Стерилизация оптических инструментов Основным методом стерилизации оптических инструментов, требую­щих наиболее щадящей обработки с исключением нагревания, является газовая" стерилизация. Этим способом обрабатываются все инструменты для проведения лапароскопических и торакоскопических вмешательств, что связано с их сложным устройством и дороговизной.При стерилизации фиброгастроскопов, холедохоскопов, -колоноско-пов возможно применение и холодной стерилизации с использованием химических антисептиков (этиловый спирт, хлоргексидин, сайдекс - двухкомпонентный препарат на основе глутарового альдегида).Следует особо отметить, что наилучшим способом профилактики кон­тактной инфекции является использование одноразового инструмента­рия, подвергшегося лучевой заводской стерилизации.

11. Шовный материал, классификация. Стерилизация шёлка, капрона.

СТЕРИЛИЗАЦИЯ ШОВНОГО МАТЕРИАЛА а) Виды шовного материала Существует достаточное разнообразие видов шовного материала. Шовный материал естественного и искусственного происхождения К шовному материалу естественного происхождения относятся шелк, хлопчато-бумажная нить и кетгут. Кетгут изготавливают из подслизистого слоя кишки круп­ного рогатого скота. Шовный материал искусственного происхождения в настоящее время представлен огромным количеством нитей, созданных из синтетических химических веществ: капрон, лавсан, фторлон, полиэстер, дакрон и пр. Рассасывающийся и нерассасывающийся шовный материал Рассасывающиеся нити используются для сшивания быстро сраста­ющихся тканей в тех случаях, когда не нужна высокая механическая прочность. Таким материалом сшивают мышцы, клетчатку, слизистые оболочки органов желудочно-кишечного тракта, желчных и мочевых путей. Классическим примером рассасывающегося шовного материала яв­ляется кетгут. Кетгутовые нити полностью рассасываются в организме через 2-3 недели. К синтетическим рассасывающимся материалам относятся дексон, викрил, оксцилон. Срокиих рассасывания примерно такие же, как у хро­мированного кетгута, но они обладают повышенной прочностью, чте по­зволяет использовать более тонкие нити. Все остальные нити (шелк, капрон, лавсан, полиэстер, фторлон, ме­таллические скрепки и пр.) являются нерассасывающимися - они ос­таются в организме больного на всю его жизнь. Травматический и атравматичесий шовный Материал В течение многих лет во время хирургической операции операцион­ная сестра непосредственноперед наложением шва вдевала соответству­ющую нить в разъёмное ушко хирургической иглы. Такой шовный мате­риал в настоящее время называют травматическим. В последние десятилетия широкое распространение получил атравматический шовный материал.Нить прочно в заводских условиях соединена с иглой и предназначе­на для наложения одного шва. Основным преимуществом: атравматического шовного материала является примерное соответствие диаметра нити диаметру иглы (при использовании травматического - толщина нити зна чительно меньше диаметра ушка иглы), таким образом нить практичес­ки полностью закрывает собой дефект в тканях после прохождения иглы. Несколько особняком стоят металлические скрепки, клеммы, клип­сы, изготавливаемые из нержавеющей стали, титана, тантала и других сплавов. б) Способы стерилизации, шовного материала В настоящее время основным способом стерилизации шовного материала является лучевая стерилизация в заводских условиях. Это в пол­ной мере касается атравматического шовного материала: игла с нитью помещается в отдельную герметичную упаковку, на которой указаны размеры и вид иглы (колющая или режущая), материал, длина и номер нити. Шовный материал стерилизуется и в упаковке поступаетв лечеб­ные учреждения. Классические способы стерилизации шелка (метод Кохера), кетгу­та (методы Ситковского в парах йода, Губарева и Клаудиуса в спирто­вом и водном растворах Люголя) в настоящее время практически остав­лена из-заих длительности, сложности и не всегда достаточной эффективности.В условиях стационара сейчас стерилизуются только капрон, лав­сан и металлические скрепки. Стерилизуют их кипячением или автоклавированием. После стерилизации или вскрытия упаковок после лу­чевой стерилизации шовный материал, можно хранить только в 96° этиловом спирте.

2. Роль Пирогова в развитии отечественной хирургии.

Николай Иванович Пирогов (1810- 1881) в 1828 г. окончил медицинский фа­ культет Московского университета и был направлен в Дерпт в Профессорский ин­ститут для подготовки к преподаватель­ской деятельности. В 1832 г_. Н. И. Пирогов защитил докторскую диссер­тацию «О перевязке брюшной аорты" . С 1836 г. Н. И. Пирогов заведовал хирургической клиникой в Дерптском университете. В 1841 г. он перешел, в Петербург в Медико-хирургическую академию, по его предложению была создана новая клиника госпиталь­ной хирургии и патологической_анатомии; он оставался на этой кафедре до 1856 г. Н. И. Пиротов писал: «...Никто еще не представил такого полного. изображения нормального положения органов, как я».Положение многих органов (сердца, желудка, кишок) оказалось во­все не таким, как оно представляется обыкновенно при вскрытиях, когда от давления воздуха и нарушения целости герметически закрытых поло­стей это положение изменяется до крайности». Значение научной деятельности Н. И. Пирогова заключается в созда­нии естественнонаучной основы хирургии и в преодолении в значительной мере эмпиризма. Н. И. Пирогов заложил фундамент новой науки хирурги­ческой анатомии. Он разработал способ костнопластического удлинения костей голени при вылущении стопы (1851), писал о резекции коленного сустава, о перерезывании ахилловой жилы и о пластическом процессе, происходящем при сращении, концов перерезанной жилы, о ринопла­стике.Велики заслуги Н. И. Пирогова в области обезболивания. Одним из первых в Европе, применив эфир во время операции, Н. И. Пирогов впервые в мире воспользовался эфирным наркозом при оказании помощи раненым на поле сражения в Салтах. Общеизвестна выдающаяся роль И. И. Пирогова в создании военно-полевой хирургии и разработке вопросов организаций воеино-медицинско-_ го дела. Н. И. Пирогов высказался за рассечение входного и выходного отверстий «при неудобствах транспорта раненых "и при недостатках тща­тельного присмотра за ними», отказался от ранних ампутаций при огне- стрельных ранениях конечностей с повреждением костей, рекомендовал «сберегательную хирургию», разработал и ввел в широкую практику мето­ды иммобилизации конечности (крахмальную, гипсовуюповязки). Н. И. Пирогов первый в России ввел гипсовую повязку. Многие стороны научной и клинической деятельности Н. И. Пирогова имели существенное влияние на последующее развитие медицины и сохранили свое значение для современной медицины: создание топографической и хирургической анатомии, введение в хирургическую практику эфирного наркоза, истолкование воспаления как реакции организма в целом, разработка учения о инфекционной природе раневого процесса, о действии антисеитиков.

12. Стерилизация хирургических инструментов.

СТЕРИЛИЗАЦИЯ ХИРУРГИЧЕСКИХ ИНСТРУМЕНТОВ а) Предстерилизационная подготовка Предстерилизационная подготовка складывается изобеззаражива­ния, мытья и высушивания. Ей подвергаются все виды инструментов.Вид и объем предстерилизационной обработки в недавнем прошлом определялся степенью инфицированности инструментов. Все процедуры предстерилизационной обработки обязательно выпол­няются в перчатках! Обеззараживание Непосредственно после использования инструменты погружаются в емкость с дезинфицирующими средствами (накопитель). При этом они дол­жны быть полностью погружены в раствор. В качестве дезинфицирующих средств используется 3% раствор хлорамина (экспозиция 40-6.0 минут) или 6% раствор перекиси водорода (экспозиция 90 минут). После обез­зараживания инструменты промываются проточной водой. Мыть ё Инструменты погружаются в специальный моющий (щелочной) ра­створ, в состав которого входит моющее средство (стиральный порошок), перекись водорода и вода. Температура раствора 50-60°С, экспозиция 20 минут После этого инструменты моют щетками в том же растворе, а затем в проточной воде. Высушивание Высушивание может осуществляться естественным путем. В послед­нее время, особенно при последующей стерилизации горячим воздухом, инструменты сушат в сухожаровом шкафу при 80°С в течение 30 минут. После высушивания инструменты готовы к стерилизации. Выбор метода стерилизации в первую очередь зависит от вида хирур­гических инструментов. б) Собственно стерилизация Все хирургические инструменты по особенностям использованных материалов и других качеств можно условно разделить на три группы: металлические (режущие и нережущие), резиновые и пластмассовые, Оптические. Стерилизация нережущих металлических инструментов. Основным методом стерилизации является стерилизация горячим воздухом в сухожаровом шкафу или в автоклаве при стандартных режимах. Возможно также использование кипячения. Однако инструмен­ты после операций по поводу анаэробной"инфекции и в группе риска по гепатиту кипятить не рекомендуется. Некоторые виды простых инстру­ментов (пинцеты, зажимы, зонды и др.), предназначенные для одноразового использования, могут стерилизоваться лучевым способом. Стерилизация режущих металлических инструментов Проведение стерилизации режущих инструментов с помощью терми­ческих методов приводит ких затуплению и потере необходимых для хи­рурга свойств. Основным методом стерилизации режущих инструментов является холодный химический способ с применением растворов антисептиков. В последнее время в перевязочных режущие инструменты, как и не­режущие, стерилизуются в сухожаровом шкафу, что приводит к некото­рому снижению их остроты, но обеспечивает абсолютную стерильность. Самыми лучшими способами стерилизации являются газовая стерилизация и особенно лучевая стерилизация в заводских условиях. Последний метод получил распространение при использовании одноразовых лезвий для скальпеля и хирургических игл (атравматический шовный материал). Стерилизация резиновых и пластмассовых инструментов Основным методом стерилизации резиновых изделий является авто-клавирование. При многократной стерилизации резина теряет свои эластические свойства, трескается, что является некоторым недостатком ме­тода. Допустимо также кипячение резиновых изделий в течение 15 минут. Пластмассовые изделия разового использования, а также катетеры и зонды подвергаются лучевой заводской стерилизации. Особо следует сказать о стерилизации перчаток. В последнее время наи­более часто используются одноразовые перчатки, подвергшиеся лучевой заводской стерилизации. При многократном использовании основным ме­тодом стерилизации является автоклавирование в щадящем режиме: после предстерилизационной обработки перчатки высушивают, пересыпают тальком (предупреждает слипание), заворачивают в марлю, укладывают в бикс и автоклавируют при 1, 1 атм. в течение 30-40 минут или при 1, 5 атм.-15-20 минут.

9. Остановка сердца. Остановка сердца. Тяжелое осложнение, которое может наступить внезапно: пульс исчезает, тоны сердца не прослушиваются, дыхание прекращается, появляется резкая бледность. Зрачки расширены, мышцы расслаблены, рана перестает кровоточить. Необходимо, продолжая искусственное дыхание и обеспечив достаточное снабжение организма кислородом, немедленно, в первые 4 минуты приступить к массажу сердца. Существуют два метода: закрытый (непрямой) и открытый. Закрытый массаж сердца, быстрый и эффективный метод восстановления сердечной деятельности, осуществляется путем ритмичного толчкообразного надавливания на нижнюю треть грудины до 60 раз в минуту. При оказании помощи двумя врачами проводится 5 толчкообразных надавливаний на грудину на одно вдувание в легкие, при оказании помощи одним врачом - через каждые два быстрых вдувания в легкие проводится 15 толчкообразных надавливаний на грудину. При каждом толчке грудина должна приближаться к позвоночнику примернона 3-4 см, сердце сдавливается и кровь поступает в сосуды малого и большого круга кровообращения. В момент прекращения давления на грудину сердечные полости наполняются кровью. При закрытом массаже сердца больного необходимо уложить на твердую поверхность. Eсли закрытый массаж сердца эффективен - появляется пульс на периферических сосудах, сужаются зрачки, кожные покровы приобретают розовый оттенок. Открытый массаж сердца может производиться трансторакальным поддиафрагмальным и чрездиафрагмальным путем.

7. Способы обработки операционного поля. В последние годы для обработки операционного поля стали применять другие антисептические препараты: 1% раствор дегмина которым обильно смачивают тампоны и дважды обрабатывают им кожу; 05% раствор хлоргексидина (водно-спиртовой) которым обрабатывают кожу дважды с интервалом в 2 мин.
Рациональным заменителем спиртового раствора йода является йодонат - водный раствор комплекса поверхностноактивного вещества с йодом. Препарат содержит 45% йода. Для обработки операционного поля употребляют 1 % раствор для чего исходный йодонат разводят в 45 раза дистиллированной водой. Кожу дважды смазывают этим раствором перед операцией. Перед наложением швов на кожу ее обрабатывают еще раз. Смотри (4).

10. Осложнения при эндотрахеальном наркозе. ОСЛОЖНЕНИЯ ПРИ ЭНДОТРАХЕАЛЬНОМ НАРКОЗЕ Перед тем как изложить осложнения эндотрахеального наркоза необходимо напомнить виды гипоксий:Гипоксическая гипоксия. Само по себе название говорит о том что во вдыхаемом воздухе мало кислорода. Чаще всего она возникает тогда, когда мы мало даем кислорода в смеси. Чаще всего такая ситуация возникает при использовании закиси азота (идеальное максимальное соотношения 3 к 1), если анестезия недостаточна и анестезиолог увеличивает долю закиси азота более 80% то обязательно развивается гипоксическая гипоксия. В жизни гипоксическая гипоксия возникает при подъеме в горы. Гемическая гипоксия. Чаще бывает при массивной кровопотере, когда мало гемоглобина. Обычно лечится она переливанием крови и ИВЛ. Циркуляторная гипоксия. Чаще всего возникает при сердечно-сосудистой недостаточности, когда кровь не доходит до микроциркуляторного русла. Чаще всего это бывает при гипотензии, когда не поддерживается нормальное капиллярное давление и естественно кислород не доходит до клеток. Гистотоксическая гипоксия возникает при различных отравлениях. В анестезиологической практике это связано с передозировкой того или иного наркотического вещества. ОСЛОЖНЕНИЯ: Осложнения связанные с интубацией: Казалось бы, интубация простая процедура, но, к сожалению, есть ряд людей с особенностями анатомо-физиологического строения: плохо разгибается голова, плохо выводится челюсть, короткий надгортанник и при интубации даже в умелых руках не видна голосовая щель. И к сожалению, до сих пор часть больных погибает от неудачной интубации. В таких случаях необходимо позвать на помощь более опытного врача. Если не справится то необходимо выполнить трахеостомии., или можно спасти человека диффузионным дыханием: простой иглой прокалывают трахею, соединяют трубочку с иглой и потоком кислорода. Имеется ввиду, что даже если человека не дышит, мы ему обеспечиваем диффузию кислорода что безопасно в течение получаса. Так как оксигенация происходит хорошо, но углекислота накапливается в смертельной дозе через 30-40 минут. Повреждение языка, задней стенки глотки, зубов. Перегиб трубки. Ларингоспазм является осложнением любого вида анестезии. Ларингоспазм опасен во время вводного наркоза, иногда настолько плотно смыкаются голосовые связки, что невозможно провести трубку. В таких случаях самым эффективным является применение мышечных релаксантов т.к. именно скелетная мускулатура участвует в ларингоспазме. Любой ларингоспазм при введении миорелаксантов снимается, но нужно иметь ввиду, что больного сразу после интубации нужно быстро переводить на ИВЛ. Бронхоспазм возникает при сокращении гладкой мускулатуры на которую миорелаксанты не действуют, поэтому применяют бронхолитики начиная с эуфиллина. Фторотан обладает мощным бронхолитическим эффектом, что может использоваться даже при терапии бронхиальной астмы.

2. Консервирование и хранение крови.

ХРАНЕНИЕ КРОВИ Консервирование крови – это комплекс воздействий на нее, имеющих своей целью создание условий для длительного хранения крови вне организма в стерильном состоянии с максимальным сохранением ее биологических свойств (как форменных элементов, так и жидкой части крови).Для консервирования крови используются два метода:консервирование при положительных температурах;консервирование при отрицательных температурах. Хранение крови при положительных температурах обычно происходит в бытовых комнатных холодильниках.Они обеспечивают поддержание температурного режима в пределах от +2 до +4°С. При таких температурах можно хранить консервированную цельную кровь, эритроцитную массу, нативную плазму.Различные компоненты крови имеют разные сроки хранения. Так, например, эритроциты могут сохранять свои свойства в течение нескольких недель, а лейкоциты и тромбоциты – только несколько дней. Это объясняется тем, что лейкоциты и тромбоциты – ядерные клетки с более сложными функциями, а при длительном хранении в первую очередь изменения затрагивают ядро клетки. Срок хранения нативной плазмы ограничен тремя днями. Это обусловлено тем, что за это время инактивируется большая часть биологически активных веществ, входящих в ее состав.Для того чтобы избежать таких нежелательных последствий при длительном хранении крови, используется ее консервирование при отрицательных температурах. Это позволяет увеличить срок хранения крови за счет того, что обменные процессы в клетках в значительной степени подавляются, а это препятствует раннему их "старению".Для криоконсервирования используются следующие температурные режимы: умеренно низкие температуры (–40...–60°С), ультранизкие температуры (–196°С). Величиной температуры определяются сроки, в течение которых эритроциты смогут сохранить свои свойства. При умеренно низких температурах они могут храниться несколько месяцев, а при ультранизких – 10 и более лет. Консервирующие растворы. Для увеличения продолжительности сроков хранения крови вне организма используют специальные растворы – гемоконсерванты. В качестве обязательного компонента во все консервирующие растворы входят особые химические вещества – стабилизаторы. Широкое распространение в практической деятельности получили такие стабилизаторы как лимонная кислота и цитрат натрия. Они связывают ионы кальция, что способствует подавлению одного из этапов процесса гемостаза – образования тромбина. Важным свойством цитрата натрия является то, что через 20–30 мин после трансфузии крови, стабилизированной с его помощью, он почти полностью (не менее 90%) выводится из организма. Необходимо помнить о том, что при острой кровопотере или других состояниях (гипотермия) в результате введения стабилизированной цитратом натрия крови может возникнуть дефицит ионов кальция (см. гл. 9), поэтому после гемотрансфузии объемом в 500 мл надо внутривенно ввести 10 мл 10% раствора хлорида или глюконата кальция. Этого бывает вполне достаточно для восполнения возникающего дефицита кальция. К другой разновидности стабилизаторов относится гепарин. Он препятствует свертыванию крови, непосредственно связывая и инактивируя тромбин. Существенным недостатком гепарина при использовании его в качестве стабилизатора является то, что он не позволяет длительно сохранять консервированную с его помощью кровь, потому что по мере увеличения срока хранения происходит инактивация гепарина. В результате этого уже через сутки образуются мелкие, а через двое суток и крупные сгустки крови. Гепарин как консервант кроме самого гепарина (50 мг) содержит глюкозу (5 г), изотонический раствор хлорида натрия (до 100 мл). У этой смеси рН=7,3. Соотношение "раствор – кровь" при консервации должна быть 1:9. Такой метод стабилизации крови используется в случае необходимости ее срочного применения. Так, гепаринизированная кровь получила применение при проведении операций с использованием аппаратов искусственного кровообращения – ею заполняют аппарат.

6. Непрямое переливание крови,проба на совместимость.

Проба на индивидуальную совместимость крови донора и реципиента . Основные понятия Пробы на совместимость групп крови АВ0 и Rh производятся отдельно. Выполняются эти пробы разными методами в связи с тем, что антитела системы АВ0 и резус-системы имеют разные свойства и проявляют свое действие при различных условиях.Целью пробы на индивидуальную совместимость является предотвращение трансфузий несовместимых эритроцитов. Проба на совместимость производится врачом, переливающим кровь, непосредственно перед трансфузией. Для этого используют сыворотку больного и кровь донора из флакона, подготовленного для переливания.Тестирование сыворотки реципиента с эритроцитами предполагаемого донора – наиболее надежный способ выявления антител, способных вызвать повреждение перелитых эритроцитов, посттрансфузионные реакции, в том числе гемолитические. Проведение такой пробы позволяет: подтвердить АВ0-совместимость донора и реципиента; выявить практически все антитела в сыворотке реципиента, направленные против эритроцитов донора. Техника проведения пробы на индивидуальную совместимость Во всех случаях, кроме срочных трансфузий, проба проводится в два этапа (первый – без использования антиглобулинового реагента, второй – с антиглобулиновым реагентом).Первый этап: Поместить 2 капли сыворотки реципиента в маркированную пробирку.Добавить 1 каплю 5% взвеси трижды отмытых эритроцитов донора в физиологическом растворе (фиксация антител происходит лучше в растворе низкой ионной силы (LISS), поэтому предпочтительнее взвесить эритроциты в растворе LISS, обычно поставляемом изготовителем вместе с антиглобулиновым реагентом).Немедленно центрифугировать при 2000 об./мин в течение 15–20 с.Просмотреть супернатант на наличие гемолиза, мягко покачивая пробирку, отделить клеточный осадок от дна пробирки и определить наличие агглютинатов. Наличие гемолиза и/или агглютинатов на этой стадии может означать: несовместимость по системе АВ0;присутствие в сыворотке реципиента полных холодовых антител по специфичности АВ0 (анти-S, анти-P1 и др.).Второй этап: Если гемолиз отсутствовал, а после встряхивания пробирки эритроциты образовали гомогенную суспензию, инкубировать пробирку 30–40 мин (при использовании LISS время инкубации составляет 10–15 мин) при +37°С. Центрифугировать пробирку (см. п. 3) и просмотреть супернатант на наличие гемолиза и агглютинатов. Наличие гемолиза и/или агглютинатов (после встряхивания пробирки) говорит о присутствии у реципиента полных тепловых антител против эритроцитов донора.Если агглютинация и гемолиз отсутствуют, отмыть эритроциты 3–4 раза большим объемом (не менее 5 мл) физиологического раствора (недостаточное отмывание может привести к инактивации антиглобулинового реагента и ложноотрицательному результату теста, поскольку сыворотка даже в разведении 1:4 000 инактивирует равный объем антиглобулинового реагента); удалить полностью физиологический раствор после последнего отмывания.Добавить 1–2 капли антиглобулиновой сыворотки и тщательно смешать.Центрифугировать пробирку (см. п. 3), мягко разбить осадок и просмотреть пробирку на наличие агглютинатов. В случае необходимости срочной трансфузии можно ограничиться только 1–4-й стадиями пробы на совместимость. В этом случае допускается также проведение теста на индивидуальную совместимость на плоскости путем смешивания 1 капли сыворотки реципиента с маленькой каплей крови донора (соотношение сыворотки и крови должно быть около 10:1). В такой постановке проба на индивидуальную совместимость сводится фактически к выявлению несовместимости только по системе АВ0.. Интерпретация результатов пробы Донор считается совместимым, если ни на одной стадии пробы на индивидуальную совместимость не наблюдается ни гемолиза, ни агглютинации. Агглютинация свидетельствует о наличии аллоантител в сыворотке реципиента, специфичность которых может быть выявлена в специальной серологической лаборатории исследованием с панелью типированных эритроцитов. Такие реципиенты нуждаются в специальном подборе донора.Качество антиглобулинового реагента гарантируется изготовителем. Не следует использовать реагент с истекшим сроком годности или после повторного замораживания–оттаивания. Полезно в качестве контроля (если у вас возникли сомнения в качестве реагента) провести антиглобулиновый тест с резус-положительными эритроцитами, сенсибилизированными неполными анти-0-антителами. Непрямое переливание Непрямое переливание крови - это основной метод гемотрансфу-зии. Он отличается простотой выполнения и несложным техническим оснащением, при нем исключается опасность инфицирования донора и отрицательный психологический эффект присутствия донора при пе­реливании. Важно, что такой метод дает возможность заготовки больших ко­личеств донорской крови, которую можно использовать как в плано­вом, так и в экстренном порядке. При непрямом переливании заготовка крови в специальные флако­ны (пакеты) с консервантом осуществляется в плановом режиме на стан­циях (в отделениях) переливания крови. Заготовленная кровь, храня­щаяся в определенных условиях, составляет так называемый банк крови и используется по мере необходимости. В то же время этот метод имеет и ряд отрицательных моментов: в процессе хранения кровь и ее компоненты теряют некоторые ценные целебные свойства, а наличие консервантов может вызывать побочные реакции у реципиента.

1. Ушибы.

УШИБОМ называется закрытое механичес-кое повреждение мягких тканеи и органов без видимо­го нарушения их анатомической целостности. Наиболее часто ушибу подвержены поверхностно расположенные мягкие ткани - кожа и подкожная клетчатка. Однако возможен и ушиб внутренних органов (ушиб головного мозга, сердца, легких). Такие трав­мы относятся к повреждениям внутренних органов и являются предме­том частной хирургии. ДИАГНОСТИКА Основными клиническими проявлениями при ушибе являются боль, припухлость, гематома и нарушение функции поврежденного органа. Боль возникает сразу в момент получения травмы и может быть весь­ма значительной, что связано с повреждением большого числа болевых рецепторов в зоне поражения. Особенно болезненны ушибы при повреж­дении надкостницы. В течение нескольких часов боль стихает, а ее даль­нейшее появление обычно связано с нарастанием гематомы. Практически сразу после повреждения становится заметнойприпух­лость, болезненная при пальпации, без четких границ, постепенно пере­ходящая в неповреждённые ткани. Припухлость нарастает в течение нескольких часов (до конца первых суток), что связано с развитием травматического отека и воспалитель­ных изменений. Время проявлениягематомы (кровоизлияния) зависит от ее глуби­ны. При ушибе кожи и подкожной клетчатки гематома становится вид­на практически сразу (имбибиция, пропитывание кожи - внутрикожная гематома). При более глубоким расположении гематома может проявиться снаружи в виде кровоподтека лишь на 2-3 сутки. Цвет кровоподтекаменяется в связи с распадом гемоглобина. Свежий кровоподтек красного цвета, затем его окраска становится багровой, а через 3-4 дня он синеет. Через 5-6 дней кровоподтеки становятся зелеными, а затем желты­ми, после чего постепенно исчезают. Таким образом по цвету кровопод­тека можно определить давность повреждений и одновременностьих получения, что особенно важно в вопросах судебно-медицинской экспер­тизы. Нарушение функции при ушибе происходит обычно не сразу, а по мере нарастания гематомы и отека. При этом возникают ограничения в активных движениях, что связано с выраженным болевым синдромом, Пассивные движения могут быть сохранены, хотя тоже весьма болез­ненны. Это отличает ушибы от передомов и вывихов, при которых на­рушение объема движений возникает сразу после травмы и касается как активных, так и пассивных движений. ЛЕЧЕНИЕ Лечение ушибов довольно простое. Для уменьшения развития гематомы и травматического отека как можно раньше следует местно применить холода покой. Для этого к ме­сту повреждения прикладывают пузырь со льдом, который желательно держать в тедение 12-24часов с перерывами через 2 часа по 30-40ми­нут. Для уменьшения движений при ушибах в области суставов наклады­вают давящую повязку (как можно раньше от момента получения трав­мы). Для уменьшения отека применяют возвышенное положение конеч­ности. Начиная во 2-3 суток для ускорения рассасывания гематомы и ку­пирования отёка применяют тепловые процедуры (грелка, ультрафиоле­товое облучение, УВД-терапия). В некоторых случаях при образовании больших гематом, особенно глубоких, их пунктируют, после чего накладывают давящую повязку. Пункции -в ряде случаев приходится повторять. Эвакуация подобных гематом необходима из-за опасности развития инфекции (нагноившаяся гематома) или ее организации (организовав­шаяся гематома).

СТЕРИЛИЗАЦИЯ ИНСТРУМЕНТОВ, ШОВНОГО И ПЕРЕВЯЗОЧНОГО МАТЕРИАЛА

инструмент стерилизация шовный материал

Стерилизация инструментов. Инструменты стерилизуют кипячением (основной способ), обжиганием (фламбированием), сухим жаром, антисептическими растворами (химическая обработка), лучами (гамма-лучи, ультрафиолетовые лучи), ультразвуком.

Стерилизация кипячением. Перед операцией инструменты стерилизуют кипячением в обычном или электрическом стерилизаторе. При отсутствии стерилизатора используют эмалированную посуду с крышкой. Источником тепла может служить электроплитка, газовая плита, примус и т. д.

Стерилизатор представляет собой металлическую коробку с крышкой и металлической сеткой, которую опускают и извлекают из кипящей жидкости с помощью металлических или пластмассовых держалок.

Из стерилизатора вынимают сетку и наливают обычную воду. Для предохранения инструментов от коррозии, почернения в воду добавляют щелочи и жидкость кипятят. Растворы щелочей способствуют осаждению солей кальция, магния, а предварительное кипячение способствует выделению кислорода.

В воду обычно добавляют 2 % натрия карбоната (углекислой соды), 0,1% натрия гидроксида (едкого натрия) и кипятят 3-5 мин. Затем в кипящую жидкость с помощью держалок опускают металлическую решетку с предварительно уложенными на ней инструментами.

Сложные инструменты (ножницы, иглодержатели, кровоостанавливающие пинцеты и др.) стерилизуют полураскрытыми или в разобранном виде. Режущие, колющие предметы обертывают марлей, иглы (хирургические, инъекционные) накалывают или заворачивают в марлю.

Инструменты в емкости стерилизуют 15-20 мин после закипания раствора. По истечении указанного срока сетку извлекают из стерилизатора и инструменты раскладывают на стерильную салфетку на инструментальном столике или оставляют в стерилизаторе, предварительно слив воду.

Стеклянные приборы (шприцы, мензурки, пробирки и др.) стерилизуют отдельно от металлических инструментов в дистиллированной, дождевой или прокипяченной воде без добавления щелочей. Шприцы кипятят обязательно в разобранном виде, так как они могут лопнуть вследствие разницы в коэффициенте расширения при нагревании стеклянного цилиндра и металлического поршня. Перед кипячением составные части шприца и другие стеклянные предметы предварительно обертывают марлей и опускают в еще не нагретую воду. Стеклянные предметы стерилизуют 15 мин. Шприцы Жанэ, кроме того, можно стерилизовать в автоклаве.

Резиновые предметы (катетеры, дренажи и др.) кипятят в дистиллированной воде в течение 30 мин или стерилизуют в автоклаве.

Стерилизация обжиганием (фламбирование). Обжигание для стерилизации инструментов в хирургической клинике практически не используется. Его можно применять при невозможности использования других методов. Этим способом обычно обеззараживают крупные инструменты (зубные щипцы, акушерские костыли и др.) и эмалированную посуду (тазики под инструменты и др.). Другие инструменты обжиганием стерилизуют редко, преимущественно при неотложных операциях, когда нет времени для кипячения. Инструмент кладут в эмалированный тазик или стерилизатор, обливают небольшим количеством (5-10 мл) спирта и равномерно обжигают. Этот метод недостаточно надежен (в замках и узких отверстиях могут остаться бактерии). Кроме того, при обжигании сильно портятся инструменты, особенно режущие.

Химическая стерилизация. Стерилизация растворами химических антисептиков относится к холодным способам стерилизации и не приводит к затуплению инструментов. Для холодной стерилизации инструменты полностью погружают в раскрытом виде в один из растворов: тройной раствор (формалин - 20г, карболовая кислота-10, натрия карбонат - 30г, вода до 1л) - на 2 -3ч; 96%-ный этиловый спирт - на 2-3ч; 6%-ный пероксид водорода - на 6ч. Реже применяют другие препараты, но они считаются менее эффективными: 3-5%-ный раствор карболовой кислоты - на 30-60 мин; раствор бактерицида 1:3000 - на 10 мин; 0,5%-ный спиртовой раствор формалина; раствор фурацилина 1:5000 и др.

Разновидностью химической стерилизации является и газовая стерилизация. Ее выполняют в специальных герметичных камерах. Стерилизующим агентом обычно являются пары формалина (на дно камеры кладут таблетки формальдегида). Инструменты, уложенные на сетку, считаются стерильными через 6- 48 ч. Метод используется для стерилизации оптических, особо точных и дорогостоящих инструментов, так как минимально отрицательно влияет на инструменты.

Стерилизация горячим воздухом (сухим жаром). Осуществляется в специальных сухожаровых стерилизаторах (шкафах). Инструменты укладывают на полки шкафа и вначале высушивают в течение 30 мин при температуре 80°С с приоткрытой дверцей, затем стерилизуют при закрытой дверце в течение 1 ч при температуре 180°С. После остывания шкафа до 50-70°С дверцу приоткрывают и разгружают стерильные инструменты при окончательном остывании.

Лучевая стерилизация. Антимикробная обработка может быть осуществлена с помощью ионизирующего излучения (гамма-лучи), ультрафиолетовых лучей и ультразвука. Наиболее часто применяют гамма-лучи. С этой целью используют изотопы 60Со и 137С. Доза проникающей радиации составляет 20- 25 МкГр. Стерилизация гамма-лучами - заводской метод и проводится в специальных помещениях с соблюдением строгих мер безопасности.

Стерилизация инструментов и других материалов гамма-лучами осуществляется в герметических упаковках, при целостности которых стерильность сохраняется до 5 лет. Герметическая упаковка удобна для хранения, транспортировки и использования инструментов (перед применением просто вскрывают упаковку).

Метод выгоден для стерилизации несложных одноразовых инструментов (шприцы, катетеры, зонды, перчатки, системы для переливания крови и т.д.) и получает все более широкое распространение.

Хранение инструментов и уход за ними. После операции инструменты моют теплой водой и затем насухо вытирают. Загрязненные гноем инструменты моют и кипятят 30-40 мин в 3%-ном растворе карболовой кислоты (лизола). Инъекционные иглы прочищают мандренами и промывают спирт-эфиром. Высушенные инструменты хранят в специальных шкафах в сухом помещении. Редко употребляемые инструменты смазывают вазелином. Резиновые предметы хранят в темном прохладном месте, так как под действием солнечного света и воздуха они затвердевают. Затвердевшие резиновые предметы погружают на 15 мин в 5%-ный теплый раствор аммиака, а затем на такое же время в 5%-ный водный раствор глицерина, после чего высушивают и хранят в темном прохладном месте.

Стерилизация перевязочного материала и хирургического белья. Перевязочный материал (бинты, салфетки, тампоны, вата и т.д.) и хирургическое белье (халаты, колпачки, полотенца, простыни и др.) стерилизуют в автоклаве (паром под давлением), утюжением и кипячением.

Стерилизация автоклавированием. Перед автоклавированием материал и белье раскладывают в специальные металлические коробки - биксы Шиммельбуша. Имеющиеся на боковой стенке бикса отверстия открывают перед загрузкой в автоклав и закрывают после стерилизации при выемке из автоклава. В зависимости от размеров биксов в автоклаве их может помещаться несколько. Последовательность укладки белья в бикс зависит от его дальнейшего использования. Если расход перевязочного материала небольшой, его стерилизуют в небольших пакетах или полотняных мешочках.

Стерилизацию осуществляют, строго соблюдая инструкцию, приложенную к автоклаву. В целом порядок работы следующий. Через воронку наливают горячую воду до уровня, обозначенного на кожухе автоклава, или до заполнения водомерной трубки на 3/4 высоты. Поместив в автоклав заряженные биксы, плотно закрывают его крышку винтами и ставят баланс предохранительного клапана на 15-20 кПа. Затем закрывают все краны, кроме пароотводного и крана водомерного стекла, и нагревают воду в автоклаве (трехгорелочным примусом, газовой горелкой или электроплиткой). При появлении из пароотводного крана равномерной струйки сухого пара кран закрывают. Когда давление в автоклаве достигнет 100 кПа, через пароотводный кран выпускают весь пар вместе с остатками воздуха. Затем, закрыв пароотводный кран, доводят давление в автоклаве до определенной величины.

Время стерилизации зависит от давления в автоклаве. Так, например, при давлении ЮкПа продолжительность стерилизации 1 ч; при 15 кПа - 30 (45) мин; при 20 кПа - 20 (30) мин. При давлении 15кПа температура в автоклаве достигает 126°С, а при 20кПа-134°С. Перевязочные материалы лучше стерилизовать в автоклаве при давлении 15- 20кПа. Время стерилизации считают с момента достижения указанного давления.

Во время стерилизации нужно следить за уровнем воды и давлением в автоклаве, а также за работой предохранительного клапана, так как при неисправности его возможен взрыв автоклава.

После истечения времени стерилизации прекращают подогрев автоклава и выпускают пар через резиновую трубку, один конец которой надет на пароотводный кран, а второй опущен в ведро с холодной водой. Такой спуск пара предохраняет стерилизационную от сырости. Когда пар перестанет выходить и стрелка манометра дойдет до нуля, отвинчивают и открывают крышку автоклава.

Чтобы избежать ожога при открывании автоклава, нужно стоять со стороны, противоположной от свободного края крышки, и открывать последнюю на себя.

Биксы вынимают из автоклава после того, как будут закрыты в их стенках отверстия; иногда для просушки стерилизуемого материала биксы оставляют в автоклаве на 20-30 мин.

Надежность стерилизации контролируют химически чистой серой, точка плавления которой равна 117°С. Для этого в середину бикса перед стерилизацией помещают пробирку с порошкообразной серой. Если после стерилизации сера превратится в гомогенную массу (расплавится), это указывает на то, что стерилизуемый материал подвергся воздействию температуры выше 117°С и является стерильным.

Стерилизация кипячением. Применяют его сравнительно редко, так как перевязочный материал после такой стерилизации остается влажным, что снижает его всасывающую способность.

Материал, подлежащий стерилизации, заворачивают в марлевую салфетку, укладывают в стерилизатор или другую посуду и заливают водой или раствором этакридина лактата (1: 1000). Воду (раствор) нагревают любым нагревательным прибором (примус, газовая горелка и др.). Стерилизуют в воде 2 ч, в растворе этакридина лактата 1 ч с момента закипания. После окончания стерилизации сливают воду или раствор, охлажденный перевязочный материал отжимают продезинфицированными руками и укладывают в ту же посуду, в которой его стерилизовали.

Стерилизация шовного материала. Для хирургических швов и наложения лигатур используют шелковые, льняные, хлопчатобумажные, синтетические нити, кетгут, металлические скобки, проволоку.

Шовный материал может быть естественного и искусственного происхождения. К шовному материалу естественного происхождения относятся шелк, хлопчатобумажные нити и кетгут. Кетгут представляет собой различной толщины нити, изготовленные из подслизистого слоя кишок овец. В зависимости от толщины различают 11 номеров нити - от № 000 до № 8. Длина нити обычно не более 1 м.

В настоящее время широко используют шовный материал искусственного происхождения, созданный из синтетических химических веществ: капрон, лавсан, фторлон, полиэстер, дакрон и пр.

Различают рассасывающийся и нерассасывающийся шовный материал. Рассасывающиеся нити используются для сшивания быстро срастающихся тканей в тех случаях, когда не нужна высокая механическая прочность. Таким материалом сшивают мышцы, клетчатку, слизистые оболочки органов желудочно-кишечного тракта, мочевых путей.

Классическим примером рассасывающегося шовного материала является кетгут. Кетгутовые нити полностью рассасываются в организме через 2-3 нед. Удлинение сроков рассасывания до 1-2 мес., а также увеличение прочности кетгута достигается импрегнацией нитей металлами (хромированный, реже - серебряный кетгут).

Синтетические рассасывающиеся материалы - дексон, викрил, оксицилон. Сроки их рассасывания примерно такие же, как у хромированного кетгута, но они обладают повышенной прочностью, что позволяет использовать более тонкие нити.

Все остальные нити (шелк, капрон, лавсан, полиэстер, фтор-лон, металлические скрепки) - нерассасывающиеся. Они, кроме снимаемых кожных швов, остаются в организме животного.

Различают плетеный и крученый шовный материал. Плетеный труднее изготавливать, но он более прочный.

В последнее время стали использовать моноволокно, которое обладает высокой механической прочностью при малом диаметре. Такой материал применяют при операциях на глазах, сосудах (микрохирургия).

Широкое распространение в хирургической практике получает атравматичный шовный материал. При классическом способе наложения шва нить вдевается в разъемное ушко хирургической иглы и диаметр нити всегда меньше диаметра ушка иглы (травматический шовный материал). При атравматическом шовном материале нить в заводских условиях прочно соединяется с иглой и предназначена для наложения одного шва. Основным преимуществом атравматического шовного материала является примерное соответствие диаметра нити диаметру иглы. После прохождения такой иглы нить практически полностью закрывает собой дефект в тканях.

Чаще всего используют шелковые нити. Они бывают различной толщины и выпускают их либо в мотках длиной 8 м (нестерильные), либо в ампулах (стерильные). В зависимости от толщины нити различают 13 номеров шелка - от № 000 до № 10. В ветеринарной практике наиболее часто употребляют шелк № 1 - тонкий (0,01 см), № 4 - средний (0,1 см), № 8 - толстый (0,14 см).

Стерилизация шелка. Шелк предварительно моют в горячей воде с мылом, высушивают стерильным полотенцем и наматывают на стеклянные катушки, палочки или предметные стекла с закругленными краями. После этого его стерилизуют одним из следующих методов.

Способ Садовского. Шелк на 15 мин опускают в 0,5%-ный раствор нашатырного спирта, стерильным пинцетом переносят его в 2%-ный раствор формалина на 65%-ном спирте (формалин -2 мл, спирта 96%-ного - 68, воды 32 мл) и хранят в этом растворе до употребления, но не менее 15 мин.

Способ Деница. Шелк кипятят в течение 15 мин в растворе дихлорида ртути 1: 1000. До употребления хранят в 96%-ном спирте. Перед употреблением шелк рекомендуется прокипятить в растворе дихлорида ртути 1: 1000 в течение 15 мин.

Способ Кохера. Шелк для обезжиривания на 12ч помещают в эфир, на 12 ч переносят в 70%-ный спирт, а затем 10 мин кипятят в растворе дихлорида ртути 1: 1000. До употребления хранят в 96%-ном спирте. Перед операцией шелк снова кипятят 2 мин в растворе дихлорида ртути 1: 1000.

Стерилизация хлопчатобумажных и льняных ниток. Эти нитки обладают меньшей прочностью, чем шелковые и синтетические. Обычно пользуются нитками № 10 и № 20. Хлопчатобумажные и льняные нитки стерилизуют как шелковые по способу Садовского или погружают на 24ч в 4%-ный водный раствор формалина. В нем же и хранят.

Стерилизация кетгута. Обрабатывать кетгут кипячением или другим способом с применением высокой температуры нельзя. Перед стерилизацией его свертывают в колечки или наматывают на стеклянные катушки. Стерилизовать его можно несколькими способами.

Способ Губарева. Кетгут обезжиривают в бензине в течение 12 ч, просушивают и погружают на 14 сут. в банку с 1-2%-ным спиртовым раствором йода (йод кристаллический - 2 г, калия йодид - 3, глицерин - 4, спирт этиловый - 100 г). По истечении 14 сут. кетгут переносят в другую банку с таким же раствором и в нем хранят.

Способ Покатило. Без предварительного обезжиривания кетгут погружают на 72 ч в 4%-ный раствор формалина.

Способ Садовского-Котылева. Кетгут на 30 мин опускают в 0,5%-ный раствор нашатырного спирта и переносят в 2%-ный раствор формалина на 65%-ном спирте, в котором и хранят до употребления, но не менее 30 мин.

Стерилизация синтетических нитей. Синтетические нити (капрон, лавсан) стерилизуют кипячением и хранят в 96%-ном спирте.

Классические способы стерилизации шовного материала сравнительно длительны и сложны. В настоящее время основной способ стерилизации шовного материала - лучевая стерилизация в заводских условиях. Так стерилизуют травматический шовный материал, который поставляют в герметичной упаковке. Кетгут помещают с антисептиком в специальные стеклянные ампулы. После вскрытия упаковок или ампул шовный материал можно хранить только в 96%-ном этиловом спирте.

Физические:

а) Обжигание и кипячение.

Обжигание в настоящее время в хирургической клинике не используется. Кипячение применяется редко, так как достигаемой температуры недостаточно для гибели спороносных бактерий. Обычное время стерилизации – 30 минут с момента закипания.

б) Стерилизация паром под давлением (автоклавирование)

Этим методом стерилизуют изделия из стекла и металла. Метод непригоден для стерилизации изделий из текстиля (белье, перевязочный материал, вата и т.д.) из-за низкой теплопроводности воздуха и опасности самовозгорания. Действующий агент – нагретый воздух. Стерилизация осуществляется в специальных аппаратах – сухожаровых шкафах – в течение 1 часа при температуре 180 0 С.

г) Лучевая стерилизация

Антимикробная обработка может осуществляться с помощью ионизирующего излучения, ультрафиолетовых лучей и ультразвука в заводских условиях. Стерилизация производится в герметичных упаковках и при целостности последних сохраняется до 5 лет.

Химические:

а) Газовая стерилизация

Стерилизующий агент: пары формалина, окись этилена. Инструменты помещаются в специальные герметичные камеры и считаются стерильными через 6-48 часов (в зависимости от компонентов газовой смеси и температуры в камере). Этот способ используют прежде всего для стерилизации оптических, особо точных и дорогостоящих инструментов.

б) Стерилизация растворами антисептиков.

6% раствор перекиси водорода (при комнатной температуре время стерилизации 360 минут, при подогреве раствора до 500С – время стерилизации 180 минут);

Дезоксон-1 (время стерилизации при комнатной температуре – 45 минут);

Глутаровый альдегид фирмы «Реанал» 2,5% (время стерилизации при комнатной температуре – 360 минут);

Препарат «SIDEX» фирмы «Джонсон и Джонсон» (время стерилизации при комнатной температуре для изделий, в конструкцию которых входят полимерные материалы, - 10 часов, для инструментов из металла – 4 часа).

В настоящее время основным способом стерилизации шовного материала является лучевая стерилизация в заводских условиях.

В условиях стационара сейчас стерилизуются только капрон, лавсан и металлические скрепки автоклавированием или кипячением. После стерилизации или вскрытия упаковок после лучевой стерилизации шовный материал хранят в 96 0 этиловом спирте.

Классические способы стерилизации шелка (метод Кохера) и кетгута (методы Ситковского, Губарева и Клаудиуса) применяются редко из-за их длительности, сложности и не всегда достаточной эффективности.

41. Использование одноразового материала и Инструментария. Стерилизация ионизирующим, ультрафиолетовым, ультразву­ковым излучением. Современные средства и методы химической стерилизации и дезинфекции.

Физические методы стерилизации

Обжигание и кипячение

Обжигание в хирургической практике для стерилизации инструментов не используется.

Все меньше применяется в настоящее время и стерилизация инструментов с помощью кипячения, так как при этом методе достигается температура лишь в 100 0 С, что недостаточно для уничтожения спороносных бактерий.

Стерилизация паром под давлением (автоклавирование)

При этом способе стерилизации действующим агентом является горячий пар. В автоклаве возможно нагревание воды под повышенным давлением, что приводит к повышению точки кипения воды и соответственно пара до 132,9 0 С (при давлении 2 атм.).

Метод автоклавирования применяется для стерилизации хирургического инструментария, перевязочных материалов, белья, перчаток, которые погружаются в специальные металлические биксы Шиммельбуша.

Работа автоклава контролируется показаниями манометра и термометра.

Основные режимы стерилизации:

При давлении 1,1 атм. (t – 119,6 0 C) – 45 мин – стерилизация перчаток.

При давлении 2 атм. (t – 132,9 0 C) – 20 мин – стерилизация перевязочного материала, белья, хирургического инструментария.

Закрытый бикс сохраняет стерильность находящихся в нем предметов 72 часа.

Сухожаровая стерилизация

Действующим агентом при этом способе является нагретый воздух. Стерилизация осуществляется в специальных аппаратах – шкафах-стерилизаторах.

Следует отметить, что горячий воздух в отличие от водяного пара служит только переносчиком тепла. В связи с этим температура стерилизации повышается и должна быть 160 - 200 0 С. При температуре 180 0 С время стерилизации составляет 60 минут. При определении времени стерилизации необходимо принимать во внимание время уравновешивания, которое продолжительнее, чем при стерилизации паром.

Стерилизация в сухожаровом шкафу является главным и наиболее надежным способом стерилизации хирургических инструментов.

Лучевая стерилизация .

Используют гамма и бета - частицы и относительно тяжелые нейтроны, протоны и т. д. Разница вызываемых ими биологических изменений почти незаметна. Радиоактивное излучение, проходя через среду, вызывает ионизацию последней, в связи с чем его называют ионизирующим излучением. Бактерицидный эффект ионизирующего излучения обусловлен воздействием на метаболические процессы бактериальной клетки. Наибольшее применение получила стерилизация гамма-лучами. Используются изотопы Co 60 иCs 138 . Доза проникающей радиации значительна и составляет 2-2,5 Мрад. В связи с этим лучевая стерилизация в стационарах не производится и применяется в промышленных условиях.

Метод применяется для стерилизации одноразовых инструментов (шприцы, шовный материал, катетеры, зонды, системы для переливания крови, перчатки и др.). При сохранении целостности упаковки стерильные свойства предметов сохраняются в течение 5 лет.

Ультразвуковая стерилизация

Механические колебания с частотой от 2х10 4 до 2х10 8 колебаний в 1 секунду не воспринимаются ухом человека и называются ультразвуком. Для искусственного получения ультразвука служат специальные приборы. Источником ультразвука являются кристаллы кварца, турмалина, обладающие пьезоэлектрическими свойствами. Пьезоэлектрический эффект обусловлен явлением электрической поляризации кристаллов.

Ультразвуковая кавитация приводит к образованию свободных радикалов, диссоциации молекул воды на ионы Н + и ОН - , что приводит к нарушению окислительно-восстановительных процессов в микробной клетке.

Ультразвуковые волны используются для стерилизации инструментов, подготовки рук медицинского персонала к операции. Для этого руки (инструменты) погружают в специальную ванну с дезинфицирующим раствором, через который пропускают ультразвуковые волны.

Стерилизация инфракрасными лучами

Применяется в инфракрасных и конвейерных печах с глубоким вакуумом для скоростной стерилизации хирургического инструментария.

Инфракрасная печь представляет собой двухстороннюю автоматизированную камеру, снабженную 8 инфракрасными нагревателями и вакуумным насосом. Сначала в камере создается разряжение 1 - 2 мм. рт. ст., а затем производится нагревание до 280 гр. С. в течение 7 минут. По окончании стерилизации вместо воздуха в камеру впускают азот. Это приводит к быстрому охлаждению и предотвращает окисление инструментов.

Конвейерная печь, изготовляемая в Англии, работает при t -180 0 С. Стерилизация осуществляется в течение 7,5 минут.

Химические методы стерилизации

К химическим методам относят газовую стерилизацию и стерилизацию растворами антисептиков.

Газовая стерилизация.

Газовая стерилизация осуществляется в специальных герметичных камерах. Стерилизующими агентами обычно являются пары формалина (на дно камеры кладут таблетки формальдегида) или окись этилена. Стерильность инструментария достигается за счет алкилирования протеинов бактерий через 6-48 часов (в зависимости от компонентов газовой смеси и температуры в камере).

Рабочей концентрацией окиси этилена является 555мг/л. В связи с тем, что окись этилена взрывоопасна, ее чаще всего используют в смеси с инертными газами (10% окиси этилена и 90% углекислоты). Эта смесь в литературе обозначается как карбокс или карбоксид. Активность окиси этилена возрастает при повышении температуры (в 2,74 раза на каждые 10 0 С повышения температуры).

Отличительной особенностью метода является минимальное отрицательное влияние на качество инструментария, в связи с чем его используют для стерилизации оптических, особо точных и дорогостоящих инструментов. Метод применятся непосредственно в стационарах.

Стерилизация растворами антисептиков

В основном используется для стерилизации режущих хирургических инструментов.

Для стерилизации используются: тройной раствор А, 96% этиловый спирт и 6% р-р перекиси водорода, спиртовой р-р хлоргексидина, первомур.

Для «холодной» стерилизации инструменты погружают в разобранном или в раскрытом виде в один из этих растворов. При замачивании в спирте и тройном растворе А инструменты становятся стерильными через 2-3 часа, в перекиси водорода – через 6 часов.

При стерилизации в мешке перевязочный материал белье укладывают не плотно, мешок завязывают тесемками. Мешок опускают в другой такой же точно и завязывают. При необходимости использования материала мешок помещают на табурет,санитарка развязывает верхний мешок,разводит его края и сдвигает книзу.Операционная сестра развязывает внутренний мешок стерильными руками,раскрывает его и извлекает материал.

Стерилизация перевязочного материала, операционного белья:

Этап 1 - предстерилизационая подготовки материалов. К перевязочному материалу относятся марлевые кульки, салфетки, тампоны, турунды, бинты, а также халаты хирургические, простыни, полотенца, маски, шапочки, бахилы. Применяют их во время операций и перевязок с целью осушения ран, остановки кровотечения, для дренирования или тампонирование раны. Перевязочный материал готовят из марли и ватты, реже из вискозы и лигнина. Перевязочный материал готовят из марли, предварительно разрезанной на части. Марлю складывают так, чтобы края ее, были подвернуты вглубь и не, было свободного края, из которого могут обсыпаться волокна ткани. Материал заготавливают про запас, пополняя его запасы по мере расхода. Для удобства подсчета материала, который используется во время операции, его вкладывают перед стерилизацией в определенном порядке: шарики - в марлевые мешочки, салфетки связывают по 10 штук. Перевязочный материал, кроме бинтов, не загрязненных кровью, после применения сжигают.

К операционному белью относятся халаты хирургические, простыни, полотенца, маски, шапочки, бахилы. Материалом для их изготовления служат хлопчатобумажные ткани - бязь, полотно. Операционное белье многоразового пользования должно иметь специальную метку и сдаваться встирку отдельно от другого белья в специальных мешках. У халатов не должно быть карманов, поясов, простыни должны быть подшиты. Халаты, простыни, пеленки, полотенца для стерилизации складывают в виде рулонов, чтобы их легко можно было развернуть при использовании.

Этап ІІ - укладка и подготовки материала к стерилизации. Перевязочные материалы и операционное белье укладывают в биксы. При отсутствии биксов допускается стерилизация в полотняных мешках.

При универсальной укладке в бикс помещают материал, предназначенный для одной небольшой типичной операции (аппендэктомия, герниотомия, флебектомия, и т.д.).

При целенаправленной укладке в бикс закладывают необходимый набор перевязочного материала и операционного белья, предназначенных для конкретной операции (пневмонэктомия, резекция желудка, и т.п.). При видовой укладке в бикс укладывают определенный вид перевязочного материала или белья (бикс с халатами, бикс с салфетками, бикс с шариками и т.д.).

Этот материал предварительно складывается в биксы с таким расчетом: перевязочный материал (марлю, бинты) складывают так, чтобы края были подвернуты внутрь и не было свободного края,из которого могут осыпаться волокна ткани.Материал заготавливают впрок, пополняя его запасы по мере расходования.

Сначала проверяют исправность бикса, потом на дно его помешают развернутую простыню, концы которой находятся извне. Перевязочные материалы вкладывают вертикально по секторам или пачками. Материал вкладывают неплотно, чтобы обеспечить доступ пара, в середину помещают индикаторы режима стерилизации, края простыни завертывают, бикс закрывают крышкой и замыкают замок. На крышке бикса прикрепляют бирки из клеенки, на которой указывают название материалов, а после стерилизации - дату и проведение и фамилию человека, которые осуществляли стерилизацию.

Этап III - стерилизация. Перевязочные материалы и операционное белье стерилизуются в автоклаве на протяжении 40 минут при давлении 2 атм. и температуре 132,9°С.

Этап IV - сохранение стерильного материала. По окончании стерилизации и сушки белья, стерилизационную камеру разгружают, биксы вынимают, сразу закрывают и переносят на специальный стол для стерильного материала. Сохраняют биксы в шкафах под замком в специальной комнате.

Контроль за стерильностью материала и режимом стерилизации в автоклаве проводится прямым и косвенным способами. Прямой способ - бактериологический; посев из перевязочного материала и белья или использование бактериологических тестов. Посев делают таким образом: в операционной раскрывают бикс, маленькими кусочками марли, увлажненной изотоническим раствором хлорида натрия, несколько раз проводят по белью, после чего кусочки марли погружают в пробирку, которую направляют в бактериологическую лабораторию. Для бактериологических тестов используют пробирки с известной спороносной непатогенной культурой микроорганизмов, которые гибнут при определенной температуре. Пробирки вкладывают в бикс, по окончании стерилизации вытягивают и направляют в лабораторию. Отсутствие роста микробов свидетельствует о стерильности материала. Исследование посевов из перевязочного материалов и белья выполняется один раз в 10 дней.

Косвенные способы контроля стерильности материалов применяют постоянно при каждой стерилизации. Для этого используют вещества с определенной точкой плавления: бензойную кислоту (120°С), резорцин (119°С), антипирин (110°С). Эти вещества выпускаются в ампулах. Их применяют также в пробирках (по 0,5 г), закрытых марлевой пробкой. В бикс между пластами материалов закладывают 1-2 ампулы. Плавление порошка и превращение его в сплошную массу указывают на то, что температура в биксе равна точке плавления контрольного вещества или превышала ее. Для контролей режима стерилизации в сухожаровых стерилизаторах используют порошковидные вещества с более высокой точкой плавления: аскорбиновую кислоту (187-192°С), янтарную кислоту (180-184°С), пилокарпина гидрохлорид (200°С), мочевину (180°С).

В настоящее время применяют разнообразные индикаторы контролей стерильности, которые изготовляются в заводских условиях. В основу их применения положена способность химических веществ изменять свои физико-химические и цветовые показатели при определенной температуре.

Стерилизация инструментов:

Этап І - предстерилизационной подготовки. Ее цель - тщательное механическое очищение инструментов, шприцев, инъекционных игл, систем для трансфузии, удаление пирогенных веществ и уничтожение вируса гепатита.

Порядок предстерилизационной подготовки инструментария:

Дезинфекция;

Замачивание в мыльно- перекисном растворе на 15мин. при Т 50 °С.;

Мытье проточно 30 сек в мыльно - перекисном растворе с помощью ватно-марлевого тампона;

Полоскание под проточной водой на протяжении 30 сек.;

Полоскание дистилированной водой;

Просушивание;

Пробы на качество предстерилизационной подготовки (пробы на наличие моющих средств, пробы на наличие остатков крови, пробы на наличие остатков жира.).

Этап II - укладка и подготовка к стерилизации. После предварительного просушивания на воздухе инструменты вкладываются для сушки в сухожаровый шкаф, который нагревают до 80°С при открытой двери. Потом дверь шкафа закрывают, и начинают стерилизацию.

Этап III - стерилизация. Стерилизация инструментов, шприцев, игл, стеклянной посуды проводится в сухожаровых шкафах-стерилизаторах. После закрытия двери шкафа доводят, температуру до 160 °С или 180°С, поддерживая ее автоматически. Стерилизация длится на протяжении 60 минут при 180°С, или 150 минут при 160 °С. После отключения системы подогрева и снижение температуры к 70-50°С открывают дверь шкафа, и стерильным инструментом закрывают крышками металлические коробки с инструментами.

Стерилизацию инструментов, которые содержат пластмассовые детали (например, кассеты со скрепками), шприцев можно делать в паровом стерилизаторе (автоклаве). Упакованные предметы вкладывают в стерилизационную камеру. Если упаковки положены в биксы, то их части должны быть открыты. Хирургические инструменты и шприцы стерилизуют на протяжении 20 минут при 2 атм. и температуре 132,9°С. Время начала стерилизации отсчитывают от периода достижения соответствующего давления. Резиновые перчатки, системы для переливания крови, резиновые дренажные трубки стерилизуют при 1,1 атм. и температуре 120 °С на протяжении 45 мин. или при 0,% атм. и температуре 110 °С на протяжении 180 мин При разгрузке автоклава закрывают отверстия в биксах.

Методы стерилизации в сухожаровых и паровых стерилизаторах следует рассматривать как основные. Метод стерилизации кипячение согласно ОСТ42-21-2-85 «Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения» применяется.

Стерилизацию инструментов и предметов, которые не подлежат термической обработке (эндоскопы, торакоскопы, лапароскопы, аппараты или блоки аппаратов для искусственного кровообращения, гемосорбции), осуществляют в специальном газовом стерилизаторе. Предметы для стерилизации помещают в герметичную стерилизационную камеру, которую наполняют окисью этилена. Срок экспозиции - 16 часов при температуре 18°С. Стерилизация может проводиться также смесью окиси этилена и бромистого метилена при температуре 55°С на протяжении 6 часов.

Этап IV - сохранение стерильного материалов. Стерильные материалы сохраняют в специальном помещении. Не допускается хранение в одном помещении нестерильных и стерильных материалов. Стерильность материалов в биксах (если они не приоткрывались) сохраняется на протяжении 48 часов, а при условии дополнительной упаковки материала в хлопчатобумажный мешок - 72 часа. При централизованной стерилизации шприцы сохраняют стерильность на протяжении 25 дней.

Определение и классификация методов стерилизации режущих, оптических и общехирургических инструментов. Стерилизация режущих инструментов проводится суховоздушным методом при Т 180°С, обвернутых в два пласта специальной бумаги.

Стерилизация инструментов и оптических аппаратов (лапароскоп, торакоскоп) может быть проведенная в спиртовом растворе первомуру, 2,5% растворе глутарового альдегида на протяжении 360 минут или раствор препарата «Сайдекс» на протяжении 660 минут. Стерилизацию аппаратов и инструментов химическими средствами следует проводить в металлических коробках с крышками, которая предупреждает испарение препарата. При отсутствии специальной посуды стерилизуют в эмалированной или стеклянной посуде. Инструменты заливают раствором так, чтобы он целиком покрывал их, и закрывают крышкой. В экстренных случаях, когда невозможно обеспечить стерилизацию инструментов по одном из указанных способов, используют стерилизацию инструментов выжиганием. В металлический лоток наливают 15-20 мл спирта, несколько инструментов укладывают на дно и спирт поджигают. Метод выжигания недостаточно надежный, пожарно- и взрывоопасный (наличие кислорода, пар наркотических веществ в воздухе помещений). Поэтому к нему прибегают в исключительных случаях, строго следуя правилам противопожарной безопасности.